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弄懂代谢组学分析,看这一篇就够了

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拿到代谢组学数据后,应该先看什么?怎样判断数据是否可靠?如何从差异代谢物中找到真正值得验证的候选分子?学霸菌一篇搞定:代谢组学的理论基础、实验设计、分析流程以及如何在课题中应用。


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图 1:https://zhuanlan.zhihu.com/p/2025715321185609569



通俗地说,代谢组学经常被用于以下问题的探究:


• 疾病状态下哪些代谢过程发生改变?

• 药物是否纠正了异常代谢?

• 哪些代谢物可以作为诊断或疗效预测标志物?

• 某个基因或蛋白如何影响细胞代谢?

• 肿瘤细胞与免疫细胞之间是否存在代谢竞争或代谢物通讯?


因代谢物水平受到饮食、时间、药物、菌群和样本处理等多种因素影响,所以代谢组学对实验设计和质量控制的要求非常高。



非靶向与靶向代谢组学有什么区别?


1、非靶向代谢组学


非靶向代谢组学尽可能广泛地检测样本中的代谢特征,适合用于发现未知变化和筛选候选代谢物。其优势是检测范围广,适合探索;不足是部分信号只能完成初步注释,定量结果通常属于相对定量。


2、靶向代谢组学


靶向代谢组学针对预先确定的一组代谢物进行检测,通常使用标准品和标准曲线进行定性、定量。其优势是准确度、灵敏度和重复性较高,适合验证候选代谢物;不足是检测范围相对有限,难以发现预设范围以外的变化。实际研究中,常见策略是:先通过非靶向代谢组学发现候选代谢物,再采用靶向代谢组学进行独立验证。


3、样本的制备标准


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4、代谢组学检测技术与流程


目前代谢组学检测技术包括 NMR、GC-MS、LC-MS 等


核磁共振波谱(NMR):能够无损检测代谢物的结构信息,但灵敏度较低。


气相色谱-质谱(GC-MS):灵敏度高,适用于挥发性代谢物的定量分析。


液相色谱-质谱(LC-MS):广泛应用于多种类型的代谢物检测,具有高灵敏度和高通量的特点。


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图 2:https://zhuanlan.zhihu.com/p/29489771?from_voters_page=true



如何筛选差异代谢物?


常用的多元统计分析方法包括:


  • 主成分分析(PCA):用于降维和揭示数据中最大的变异方向。

  • 偏最小二乘判别分析(PLS-DA):用于找到实验组间的差异代谢物。


常见筛选指标包括:


Fold change;P 值;FDR 或校正后 P 值;VIP 值;代谢物鉴定可信度;QC 中的稳定性。


VIP 来自 PLS-DA 模型,用于评价某个变量对分组区分的贡献。常见筛选条件是 VIP>1,但 VIP 高不等于该代谢物一定具有生物学意义。


差异代谢物可以用哪些图展示?


1、火山图:展示整体差异


  • 横轴表示 log₂FC;纵轴表示−log₁₀P 值或−log₁₀FDR;

  • 右侧为升高的代谢物;左侧为降低的代谢物。


图中可以重点标注与研究方向相关、鉴定证据较可靠并准备后续验证的代谢物。


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图 3:https://zhuanlan.zhihu.com/p/28690644158


2、热图:观察样本中的表达模式


热图可以展示候选代谢物在每个样本中的相对丰度。


主要观察:


• 同组样本是否表现出相似模式;

• 不同组之间是否存在一致变化;

• 差异是否由个别异常样本推动;

• 候选代谢物之间是否形成不同变化模块。


热图一般使用标准化后的 Z-score。颜色反映的是某个代谢物在不同样本中的相对高低,不能直接比较不同代谢物的绝对含量。


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图 4:https://zhuanlan.zhihu.com/p/346138512


差异代谢物关联热图:解析不同分子间的协同调节规律。通过 Pearson 算法量化代谢物两两之间的线性相关程度(正相关趋于 1,负相关趋于 -1),并结合显著性检验,从而辅助识别处于同一通路或存在上下游调控关系的代谢物功能簇。


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图 5:https://zhuanlan.zhihu.com/p/28690644158


图中纵坐标和斜纵坐标代表差异代谢物的名称,颜色代表相关性,红色表示正相关,蓝色表示负相关,颜色越深相关性越高。


3、箱线图或散点图:展示单个候选物


单个代谢物建议使用箱线图、小提琴图或散点图,并显示每个生物学重复。


相比只展示均值的柱状图,这类图可以更加直观地反映:


• 组内变异;

• 样本量;

• 离群值;

• 组间重叠程度


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图 6:https://biotree.biomart.cn/news/2972457.htm


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图 7:https://zhuanlan.zhihu.com/p/586620162


4、ROC 曲线:评估标志物能力


如果研究目标是筛选诊断或疗效预测标志物,可以绘制 ROC 曲线,并计算曲线下面积 AUC。


但同一队列中完成候选物筛选和 ROC 评价,容易高估性能。较可靠的研究还需要:


• 独立验证队列;

• 交叉验证;

• 与现有临床指标比较;

• 校正年龄、性别、分期等混杂因素;

• 多代谢物模型的过拟合评估。


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图 8:https://blog.51cto.com/u_15668923/5350438



怎样从代谢物变化走向代谢通路?


单个代谢物通常同时参与多条通路,因此不能只根据一个代谢物升高,就判断整条通路被激活。


常见分析包括:KEGG 通路富集;代谢通路拓扑分析;代谢物集合富集分析;代谢网络分析;与基因和蛋白数据联合分析。


解释通路时,应进一步分析:


  • 命中了多少个代谢物;

  • 代谢物变化方向是否一致;

  • 是否存在关键中间产物或终产物;

  • 上下游代谢物之间能否形成合理链条;

  • 相应代谢酶和转运体是否发生变化;

  • 是否有靶向定量或功能实验支持。


例如,乳酸升高可能来自生成增加,也可能来自利用下降或外排障碍。仅凭终产物浓度,通常无法判断代谢通量方向。


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图 9:https://zhuanlan.zhihu.com/p/546286354


为系统阐明基因、酶与代谢物之间的级联调控机制,研究中常利用 MetScape 软件整合差异表达基因与差异代谢物,构建了多组学交互调控网络。在拓扑结构中,节点度(连接数)直观反映各分子的交互广泛度,高度连接的节点提示其处于网络枢纽(Hub)地位。


如下图:六边形代表代谢物,圆形代表基因,正方形代表催化酶,菱形代表生化反应过程;节点几何尺寸映射其表达量/丰度的差异变化倍数(上调或下调幅度),绿色外边框则高亮标识出具有统计学显著性的关键分子。


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图 10:https://zhuanlan.zhihu.com/p/680685984



代谢组怎样与转录组和蛋白组联合?


代谢物是代谢反应的结果,而基因和蛋白可以帮助解释这种变化可能由哪些酶或转运体驱动。


例如:某脂肪酸升高→ 脂肪酸合成酶表达增加→ 脂肪酸氧化相关蛋白降低→ 同位素示踪证实脂质合成通量增加。


常见联合分析方法包括:


• 差异代谢物与差异基因共同通路分析;

• 代谢物—酶—基因网络;

• 代谢物与基因表达相关性分析;

• 转录因子—代谢酶—代谢物调控网络;

• 多组学聚类和机器学习模型。


需要注意,mRNA 升高不一定意味着酶活性增加。酶活性还受到蛋白丰度、磷酸化、底物浓度、辅酶供应和亚细胞定位等因素影响。


因此,多组学联合的目的不是简单取交集,而是建立可以实验验证的生物学关系。


编辑:小 z
题图:自制

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